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細胞凍存和細胞復(fù)蘇對人ELISA試劑盒實驗的影響
更新時間:2013-10-15   點擊次數(shù):1186次

 

 凍存技術(shù)

 

1. 液氮法

目前,細胞凍存zui常用的技術(shù)是液氮冷凍保存法,主要采用加適量保護劑的緩慢冷凍法凍存細胞。細胞冷凍技術(shù)的關(guān)鍵是盡可能地減少細胞內(nèi)水分,減少細胞內(nèi)冰晶的形成。人ELISA試劑盒采用或二甲基亞砜作保護劑,這兩種物質(zhì)分子量小,溶解度大,易穿透細胞,可以使冰點下降,提高細胞膜對水的通透性,且對細胞無明顯毒性。慢速冷凍方法又可使細胞內(nèi)的水分滲出細胞外,人ELISA試劑盒減少胞內(nèi)形成冰結(jié)晶的機會,從而減少冰晶對細胞的損傷。

常用的細胞冷凍貯存器為液氮貯存器,規(guī)格有35L3和50L3兩種。

細胞凍存時常備的材料有:0.25%胰蛋白酶,含10%~20%的血清培養(yǎng)液,DMSO(分析純)或無色新鮮(121°C蒸氣高壓消毒),2mL安瓿(或細胞凍存管)、吸管、離心管、噴燈、紗布袋(或凍存管架)等。

主要操作步驟為:

(1)選擇處于對數(shù)生長期的細胞,在凍存前一天換液。將多個培養(yǎng)瓶中的細胞培養(yǎng)液去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。適時去掉胰蛋白酶,加入少量新培養(yǎng)液。用吸管吸取培養(yǎng)液反復(fù)吹打瓶壁上的細胞,使其成為均勻分散的細胞懸液。懸浮生產(chǎn)細胞則不要消化處理。然后將細胞收集于離心管中離心(1000r/min,10分鐘)。

(2)去上清液,加入含20%小牛血清的*培養(yǎng)基,于4℃預(yù)冷15分鐘后,逐滴加入已無菌的DMSO或,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,細胞濃度為3×106~1×107/mL之間。

(3)將上述細胞分裝于安瓿或冷凍塑料管中,安瓿裝1~1.5mL在火焰噴燈上封口,封口處要*封閉,圓滑無勾。冷凍管要將蓋子蓋緊,并標記好細胞名稱和凍存日期,同時作好登記(日期、細胞種類及代次、凍存支數(shù))。

(4)將裝好細胞的安瓿或凍存管裝入沙布袋內(nèi);置于液氮容器頸口處存放過夜,次日轉(zhuǎn)入液氮中。采用控制降溫速度的方法也可采用下列步驟:先將安瓿置入4℃冰箱中2~3小時,再移至冰箱冷凍室內(nèi)3~4小時(此步可省略),再吊入液氮容器頸氣態(tài)部分存放2小時,zui后沉入液氮中。

2. 分布降溫法

細胞系凍存程序:

1) 單層細胞的消化。將經(jīng)24~48小時培養(yǎng)已長成單層的傳代細胞培養(yǎng)物棄去生長液,加適量ATV,1~2分鐘后倒棄ATV,再加入少量ATV液,經(jīng)0.5~1分鐘倒去ATV,室溫或37oC溫箱作用2~3分鐘,視細胞解離情況,拍打細胞培養(yǎng)瓶。使單層細胞*解離。SP2/0瘤細胞,待生長好后用吸管吹打,再經(jīng)1 000轉(zhuǎn)/ 分離心lO分鐘。

2) 離心洗滌:向培養(yǎng)瓶內(nèi)加5~1 0m1預(yù)冷的MEM使細胞懸浮,人ELISA試劑盒再將其吸出置滅菌離心管中,以1 000rpm 離心8~10分鐘后棄去上清液。

3) 細胞懸液的制備:向離心管內(nèi)逐滴緩慢加入預(yù)冷的凍存保護液,使細胞濃度為150~400萬/ml,然后迅速分裝于安瓿瓶中,每瓶加量為lml。

4) 致冷凍結(jié):將安瓿瓶放入帶有棉墊的紙盒或塑料盒內(nèi),直立置不同條件下致冷凍結(jié)果保存:

a、4oC兩小時后移至一2OoC作用2小時,再移入一4OoC4小時后在一7OoC下24小時投入液氮。

b, 一20oC4小時后移致一4OoC。C經(jīng)4小時移人一7OoC冰箱24小時,投入液氮。

c, 一4OoC4小時后移入一70oC24小時后投入液氮。

d、一20oC4小時后移入一70oC經(jīng)24小時后投入液氮中。

e、一70oC24小時后投入液氮中。

5) 液氮中保存:將凍結(jié)后的安瓿裝入預(yù)冷的小布袋中,投入液氮。為防止安瓿漂浮,可預(yù)先在小布袋中加入幾塊小卵石。

3. 玻璃化法

玻璃化保存(Vitrification)是一種超速冷凍方法。它是以極快的速度冷凍細胞,使細胞內(nèi)外的游離水迅速形成玻璃樣物質(zhì),而不形成冰晶。人ELISA試劑盒這種保存方法既避免了由于慢速降溫時導(dǎo)致的鹽濃度升高,又防止了由于冰晶形成造成的物理損傷,可獲得較高存活率。

玻璃化首先由Luyet在1937年提出,他認為生命是生物活體系統(tǒng)的原子或其他結(jié)構(gòu)元的一種特殊排列.并且輕微的排列位置擾動就會破壞平衡從而導(dǎo)致死亡,而結(jié)冰時的驅(qū)動力會破壞這種特殊的排列,這就是冰凍死亡的原因。玻璃

化比凍結(jié)固化方法引起的結(jié)構(gòu)變化要小,因而是一種較理想的低溫保存途徑。

1981年,F(xiàn)ahy首先明確提出,用高濃度的低溫保護劑溶液,可在較慢地冷卻速率以及高壓條件下實現(xiàn)*的玻璃化,以后又發(fā)展了一些所謂“玻璃化溶液”,使細胞、組織乃至器官等范圍廣泛的生物系統(tǒng)玻璃化低溫保存成為可能。

1985年,Rail和Fahy[ 目用這種玻璃化溶液使鼠胚胎玻璃化保存獲得成功,是這種技術(shù)走向?qū)嵱没耐黄啤?br />復(fù)蘇技術(shù)

1. 細胞復(fù)蘇的原則

在實際操作中,凍存細胞要進行復(fù)蘇,再培養(yǎng)傳代。復(fù)蘇細胞一般采用快速融化法。以保證細胞外結(jié)晶快速融化,以避免慢速融化水分滲入細胞內(nèi),再次形成胞內(nèi)結(jié)晶損傷細胞。

2. 細胞復(fù)蘇的主要操作步驟

(1)佩戴眼鏡和手套,從液氮罐中取出安瓿或冷凍管。

(2)迅速放入38℃水浴中,并不時搖動,在1分鐘內(nèi)使其*融化,然后在無菌下取出細胞。

(3)在1000r/min速度下離心5~10分鐘,棄去上層液,加入適量培養(yǎng)液后接種于培養(yǎng)瓶中,接種濃度1×109/L,置37℃溫箱靜置培養(yǎng),次日更換一次培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng),觀察生長情況。若細胞密度較高,及時傳代?;驘o需離心直接將細胞加入瓶中,并加入培養(yǎng)基貼壁培養(yǎng)12~24小時后,充去上清,換入新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

3. 注意事項

在細胞復(fù)蘇操作時,應(yīng)注意融化凍存細胞速度要快,人ELISA試劑盒可不時搖動安瓿或冷凍管,使之盡快通過zui易受損的溫度段(-5~0℃)。這樣復(fù)蘇的凍存細胞存活率高,生長及形態(tài)良好。然而,由于凍存的細胞還受其他因素的影響,有時也會有部分細胞死亡。人ELISA試劑盒此時,可將不貼壁、飄浮在培養(yǎng)液上(已死亡)的細胞輕輕倒掉,再補以適量的新培養(yǎng)液,也會獲得較為滿意的結(jié)果。

 

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